Cavia porcellus

Source of the photo: 
http://www.scientificlib.com
Author of the description: 
Ihász Márton

Tesztorganizmus neve

Latin név

Cavia porcellus

Magyar név

Tengerimalac

Angol név

Guinea pig

Rendszertani besorolás 

-         ország

Animalia (Állatok)

-         törzs

Vertebrata (Gerincesek)

-         osztály

Mammalia (Emlősök)

-         rend

Rodentia (Rágcsálók)

-         család

Caviidae (Tengerimalacfélék)

-         nemzetség/nem

Cavia

-         faj

Cavia porcellus (Tengerimalac) [10]

Tesztorganizmus jellemzői 

Élőhely

Természetes élőhelyei a dél-amerikai gyepek, erdőszéli területek és mocsarak. [1]

Fontosabb külső jegyek

Testtömeg: 0,8-1,5 kg

Testhossz: 25-30 cm
Szőrzet szerinti változatok: angol rövidszőrű, angol bóbitás, amerikai bóbitás, abesszín, rex, teddy, svájci-teddy, sheltie, koronás, perui, angóra, texel, merinó, alpaka, mohair, skinny, lunkaira. [3]

Nincs farkuk [1]

Táplálkozás

A többi rágcsálóval ellentétben magvak helyett főleg fűfélék, zöldség, gyümölcs

Szaporodás

Emlős, 5-6 hónapos korukban vállnak ivaréretté, egy alomban átlagosan 5-6 kölyök születik. A nőstényt ha 1 éves koráig nem fedeztetik, a szeméremtájékon kialakult porcos képződmény miatt belehalhat a vemhességbe[2].

Egyéb fontosabb jellemzők

Nemzetközileg nem védett faj

Hallása rendkívül kifinomult (50–50.000 Hz)

Fajtársaik egymással az ultrahang tartományban kommunikálnak [1]

Szabványok és referenciák

Szabványosított tesztmódszer?

Igen

Szabvány típusa, száma

OECD TG-429 (Local Lymph Node Assay Test) [4]

EPA OPPTS 870,2600 (LLNA Test)[4]

OECD TG-406 (Skin Sensitisation Test/Buehler Test) [5]

 

Nem szabványos tesztmódszerek

Kálcium gátlásos vérteszt tengerimalacoknál [6]

Tengeri malac vékonybél motilitásának mérése in vitro [7]

Környezettoxikológiai alkalmazás 

Tesztorganizmus fenntartása

  • Hőmérséklet: 21°C(+/-3°C)
  • Relatív páratartalom: 30-70%
  • Mesterséges megvilágítás esetén fény ciklust kell alkalmazni, 12óra világosan, 12óra sötéten tartás
  • Korlátlan tápláléknak és ivóvíznek kell rendelkezésre állnia
  • Minden tesztállatnak egyedi a bundába borotvált azonosítójának kell lennie[9]

 

Teszteléshez használt organizmus jellemzői

Fiatal kifejlett nőstényeket kell a kísérlethez használni. Egészségeseknek kell lenniük, legalább egy vemhességen már túl kell lenniük de jelent pillanatban nem lehetnek vemhesek. Az egyedek között maximum 1 hetes korkülönbség és +/- 20% testtömeg különbség lehet. [9]

Tesztorganizmus érzékenysége

Oldószerek, Hidrofil anyagok szervezetbe jutása nedvesítheti a tesztorganizmus bőrét és ronthatja a teszt lefutását. [9]

Tesztmódszer alkalmassága

Talajban, üledékben, táplálékban található bőrirritáló és elváltozást okozó, rákos sejtek megjelenését okozó anyagok kimutatására alkalmas. [8][9]

Tesztelés elve

Különböző dózisokban be kell juttatni a feltételezett irritációt, elváltozást okozó anyagokat a tengerimalacok szervezetébe( orális, injekciós, fülön át csepegtetés stb)

Napi szinten mérni az elváltozás esetleg daganatképződés mértékét az állatok szervezetében. [9]

Tesztmódszer leírása

-Tesztállatok tömegének mérése

-Megfelelő dózis bejuttatása minden állatba az első napon

-2. és 3. nap megismételni az első napi dózist.

-4. és 5. nap nincs kezelés

-6. nap: Állatok tömegének mérése.
- 250µl steril foszfáttal pufferolt sóoldat befecskendezése az állat farktövi vénájába. Az oldat tartalmazzon 20µCi (1Ci=3,7·1010 Bq) triciummal jelzett (3H)-metil-timidint vagy 2µCi jód-dezoxiuridint és M-flourdezoxiuridint.

-5 óra elteltével az állatokat el kell pusztítani

-A nyirokmirigyekből származó váladékot és a nyirokmirigyeket be kell gyűjteni. [9]

Mérési végpontok

 Nyirokcsomó elváltozás, rákos sejtek, bőrirritáció, légzészavarok [9] [11]

Vizsgálati végpontok

ED20, ED50

Néhány jellemző érték:

Roflumilast: ED50=1,5 µmol/kg

Nitrogén-oxid ED50=1.0 µmol/kg

Piclamilast: ED50= 8.3 µmol/kg

Rolipram: ED50= 32,5 µmol/kg

Cilomilast: ED50= 52,2 µmol/kg  [9] [11]

Méréshez szükséges műszerek

Gamma sugárzás számláló csövek [9]

Tesztek időigénye

6-7 nap [9]

Egyéb 

Megjegyzések

A GPMT/Burhler tesztet mára már teljesen felváltotta a LNNA teszt tengerimalacok vizsgálatánál [8]

 

Source of description: 

Források:
[1] EOL- Information and pictures of all species known to science

http://eol.org/pages/326924/overview

 

[2] Tengerimalacok szaporítása

http://www.gemon.ro/vemhes.htm

 

[3] Házi kedvenc magazin, online kiadás, 2010-01-05

http://www.hazikedvencek.hu/index.php?com=site&menu_id=61&kezdorecord=&start=&sub=1&cikk_id=311

 

[4] MB Research Laboratories - Local Lymph Node Assay (LLNA)

http://www.mbresearch.com/llna.htm

 

[5] OECD GUIDELINE FOR TESTING OF CHEMICALS, Skin Sensitisation,1992

http://iccvam.niehs.nih.gov/methods/immunotox/llnadocs/OECDtg406.pdf

 

[6] US National Library of Medicine National Institutes of Health,

Hemodynamic effects of different calcium antagonists in the heart-lung preparation of the guinea pig

 http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/3420159

 

[7] Dr. Zádori Zoltán, A gyomornyálkahártya integritását és a

gasztrointesztinális motilitást szabályozó mechanizmusok analízise, 2009 http://phd.sote.hu/mwp/phd_live/vedes/export/zadorizoltan.d.pdf

 

[8] Anderlik Piroska dr., Torday Ferenc dr, Kísérleti állatok – állatkísérletek,    Semmelweis Kiadó és Multimédia Stúdió (2009)

 

[9] Recommended Performance Standards: Murine Local Lymph Node Assay, 2009

http://iccvam.niehs.nih.gov/docs/immunotox_docs/llna-ps/LLNAPerfStds.pdf

 

[10] Online rendszertani besorolás

http://www.itis.gov

 

[11] In Vivo Efficacy in Airway Disease Models of Roflumilast, a Novel Orally Active PDE4 Inhibitor, DANIELA S. et all, 2000

http://jpet.aspetjournals.org/content/297/1/280.full.pdf